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Une méthode novatrice pour mesurer la fidélité des ADN polymérases

En collaboration avec New England Biolabs, le groupe de recherche Réplication de l’ADN dirigé par Ludovic Sauguet à l’Institut Pasteur, a publié dans Nucleic Acids Research une approche innovante basée sur le séquençage longue lecture PacBio pour caractériser avec une précision inédite les erreurs des ADN polymérases.

Les ADN polymérases (DNAPs), enzymes essentielles à la réplication et à la réparation de l’ADN, constituent le socle de nombreuses applications biotechnologiques, de la PCR au séquençage en passant par le clonage et les thérapies géniques. Malgré leur remarquable précision, ces enzymes commettent occasionnellement des erreurs aux conséquences potentiellement importantes, qu’elles soient évolutives ou pathologiques, notamment dans le développement de cancers. Comprendre les mécanismes sous-jacents à ces erreurs représente donc un enjeu majeur pour améliorer nos connaissances mais aussi optimiser leur utilisation.

Perspectives biotechnologiques prometteuses

Ces travaux ouvrent des perspectives intéressantes pour la conception d’enzymes sur mesure, adaptées à des applications spécifiques nécessitant soit une fidélité accrue, soit au contraire une mutagénèse contrôlée, avec des applications dans les domaines biotechnologiques, thérapeutiques et diagnostiques.

Une approche méthodologique inédite

L’innovation majeure de cette étude réside dans l’utilisation d’une méthode à haut débit exploitant le séquençage longue lecture Pacific Biosciences (PacBio), sans recours à l’amplification PCR. Cette approche, non biaisée par la séquence de l’ADN matrice au contraire des autres techniques décrites jusqu’ici, permet de mesurer directement les taux d’erreur et de cartographier finement les profils d’erreurs spécifiques à chaque enzyme. Les DNAPs réplicatives possèdent en effet une double activité catalytique : une activité polymérase pour synthétiser l’ADN et une activité exonucléase de relecture pour éliminer les nucléotides mal incorporés. La méthode développée permet d’évaluer l’efficacité de ces deux mécanismes de manière intégrée.

Des profils d’erreurs famille-spécifiques révélés

Les chercheurs ont analysé les quatre principales familles d’ADN polymérases réplicatives (A, B, C et D), révélant des profils d’erreurs diversifiés et spécifiques à chaque famille. Cette caractérisation fine met en évidence des mécanismes moléculaires distincts gouvernant la fidélité de ces enzymes, offrant ainsi une compréhension approfondie de leurs modes de fonctionnement respectifs.

Facteurs influençant la fidélité enzymatique

L’étude a également identifié plusieurs paramètres critiques qui affectent la précision des DNAPs. Par exemple, les ratios des 4 désoxyribonucléotides triphosphates qui rentrent dans la composition de l’ADN (dATP, dGTP, dCTP, dTTP) dans le milieu réactionnel influencent significativement le taux d’erreur, suggérant que l’équilibre des substrats disponibles module directement la fidélité de réplication. Les composants du système de réplication et les mutations dans les sites actifs de l’enzyme – tant au niveau du domaine polymérase que de l’exonucléase – ont également été explorés, révélant comment des modifications structurelles peuvent altérer ou améliorer la précision enzymatique.

Une collaboration avec NEB, leader mondial en enzymologie, via une thèse CIFRE

La publication récente dans Nucleic Acids Research illustre parfaitement la réussite d’une collaboration avec un partenaire industriel et l’Institut Pasteur. Ces travaux, menés par Leonardo Betancurt-Anzola sous la direction de Ludovic Sauguet (groupe Réplication de l’ADN), sont le fruit d’une collaboration fructueuse avec New England Biolabs (NEB), leader mondial des enzymes pour la biologie moléculaire, à travers une thèse CIFRE (Conventions Industrielles de Formation par la Recherche).

L’objectif des thèses CIFRE est d’encourager la recherche partenariale publique-privée en plaçant les doctorants en situation d’emploi. Catalyseur du transfert technologique et de l’innovation, le dispositif CIFRE crée un cercle vertueux où recherche fondamentale et applications industrielles s’enrichissent mutuellement. Pour le laboratoire de recherche qui accueille un étudiant CIFRE, la confrontation aux problématiques industrielles permet de stimuler de nouvelles questions scientifiques et d’enrichir les axes de recherche.

A l’Institut Pasteur, la direction des applications de la recherche et des relations industrielles (DARRI) accompagne les PI dans les étapes de mise en place de la thèse CIFRE, notamment pour établir un contrat de collaboration de recherche entre l’entreprise et le laboratoire. Celui-ci est indispensable pour définir les questions de confidentialité, de propriété intellectuelle, les conditions de déroulement du partenariat et notamment la méthodologie de recherche, les lieux d’exercice du.de la doctorant.e, et le budget du programme de recherche.  

Le dispositif CIFRE repose sur l’association de quatre acteurs :

  1. l’entreprise qui recrute en CDI ou CDD un.e diplômé.e de niveau Master à qui elle confie une mission de recherche.
  2. Le laboratoire de recherche académique encadre les travaux du.de la salarié.e-doctorant.e, à ce titre ce.tte dernier.ère est inscrit.e dans l’école doctorale de rattachement du laboratoire.
  3. Le.la doctorant.e consacre 100% de son temps, partagé entre l’entreprise et le laboratoire académique, à ses travaux de recherche. Il.elle bénéficie d’une double formation académique et professionnelle.
  4. L’ANRT contracte avec l’entreprise une convention CIFRE sur la base de laquelle une subvention est versée à l’entreprise. A cette subvention peut s’ajouter le crédit d’impôt recherche (CIR).

Former Members

Pierre Raia, PhD

Clément Madru, Post-Doc

Projects

One fundamental challenge of cells is to accurately copy their genetic material for cell proliferation. DNA replication is performed by sophisticated multi-protein machines, which must synthesize DNA continuously and copy it accurately at the proper time in the life-cycle of the cell. Many of the replication factors that help replicate DNA act together in a dynamic complex with moving parts referred to as a replisome, loosely analogous to a sewing machine. However, our understanding of how these individual factors interact with one another during the replication processes is still fragmentary. Novel technical developments in Cryo-EM and single-particle analysis combined with protein crystallography and biophysical analyses, now provide biochemists with powerful tools to approach fundamental questions in DNA replication. We aim to approach fundamental questions in DNA replication by using hyperthermophilic Archaea as a model system.

Fundings

Publications

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