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© A-M. Pais-Correia, M-I. Thoulouze, A. Alcover, A. Gessain
Mise en évidence de structures de type "biofilm ", formées par le rétrovirus HTLV-1 générés par des cellules infectées (cellules du haut), qui ont été transmis à un autre lymphocyte (cellule du bas). Micrographie en microscopie électronique à balayage. Image colorisée.
Domaines Scientifiques
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Publié sur PLoS pathogens - 01 Jun 2007

Sourisseau M, Schilte C, Casartelli N, Trouillet C, Guivel-Benhassine F, Rudnicka D, Sol-Foulon N, Le Roux K, Prevost MC, Fsihi H, Frenkiel MP, Blanchet F, Afonso PV, Ceccaldi PE, Ozden S, Gessain A, Schuffenecker I, Verhasselt B, Zamborlini A, Saïb A, Rey FA, Arenzana-Seisdedos F, Desprès P, Michault A, Albert ML, Schwartz O

Lien vers Pubmed [PMID] – 17604450

PLoS Pathog. 2007 Jun;3(6):e89

An unprecedented epidemic of chikungunya virus (CHIKV) infection recently started in countries of the Indian Ocean area, causing an acute and painful syndrome with strong fever, asthenia, skin rash, polyarthritis, and lethal cases of encephalitis. The basis for chikungunya disease and the tropism of CHIKV remain unknown. Here, we describe the replication characteristics of recent clinical CHIKV strains. Human epithelial and endothelial cells, primary fibroblasts and, to a lesser extent, monocyte-derived macrophages, were susceptible to infection and allowed viral production. In contrast, CHIKV did not replicate in lymphoid and monocytoid cell lines, primary lymphocytes and monocytes, or monocyte-derived dendritic cells. CHIKV replication was cytopathic and associated with an induction of apoptosis in infected cells. Chloroquine, bafilomycin-A1, and short hairpin RNAs against dynamin-2 inhibited viral production, indicating that viral entry occurs through pH-dependent endocytosis. CHIKV was highly sensitive to the antiviral activity of type I and II interferons. These results provide a general insight into the interaction between CHIKV and its mammalian host.

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17604450