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© Structural Dynamics Of Macromolecules
The structure of a bacterial analog of the nicotinic receptor (one color per subunit) inserted into the cell membrane (grey and orange). A representation of the volume accessible to ions is shown in yellow.
Publication : Journal of molecular biology

Molecular recognition of canonical and deaminated bases by P. abyssi family B DNA polymerase

Domaines Scientifiques
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Publié sur Journal of molecular biology - 16 août 2012

Gouge J, Ralec C, Henneke G, Delarue M

Lien vers Pubmed [PMID] – 22902479

Lien vers HAL – Cliquez ici

Lien DOI – 10.1016/j.jmb.2012.07.025

J. Mol. Biol. 2012 Oct;423(3):315-36

Euryarchaeal polymerase B can recognize deaminated bases on the template strand, effectively stalling the replication fork 4nt downstream the modified base. Using Pyrococcus abyssi DNA B family polymerase (PabPolB), we investigated the discrimination between deaminated and natural nucleotide(s) by primer extension assays, electrophoretic mobility shift assays, and X-ray crystallography. Structures of complexes between the protein and DNA duplexes with either a dU or a dH in position +4 were solved at 2.3Å and 2.9Å resolution, respectively. The PabPolB is found in the editing mode. A new metal binding site has been uncovered below the base-checking cavity where the +4 base is flipped out; it is fully hydrated in an octahedral fashion and helps guide the strongly kinked template strand. Four other crystal structures with each of the canonical bases were also solved in the editing mode, and the presence of three nucleotides in the exonuclease site caused a shift in the coordination state of its metal A from octahedral to tetrahedral. Surprisingly, we find that all canonical bases also enter the base-checking pocket with very small differences in the binding geometry and in the calculated binding free energy compared to deaminated ones. To explain how this can lead to stalling of the replication fork, the full catalytic pathway and its branches must be taken into account, during which the base is checked several times. Our results strongly suggest a switch from elongation to editing modes right after nucleotide insertion when the modified base is at position +5.