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© Valérie Choumet
Mosquitoes were orally infected with the chikungunya virus. Midguts were dissected at day 5 post-infection, fixed and permeabilised. Virus is shown in red (anti-E2 protein, cyanine 3), the actin network in green (phalloidin 548) and nuclei in blue (DAPI).
Publication : Biochemistry

Deciphering the role of individual acyl chains in the interaction network between phosphatidylserines and a single-spanning membrane protein

Domaines Scientifiques
Maladies
Organismes
Applications
Technique

Publié sur Biochemistry - 19 nov. 2002

Mousson F, Coïc YM, Baleux F, Beswick V, Sanson A, Neumann JM

Lien vers Pubmed [PMID] – 12427022

Biochemistry 2002 Nov;41(46):13611-6

PMP1 is a small single-spanning membrane protein functioning as a regulatory subunit of the yeast plasma membrane H(+)-ATPase. This protein forms a unique helix and exhibits a positively charged cytoplasmic domain that is able to specifically segregate phosphatidylserines (PSs). A marked groove formed at the helix surface is thought to play a major role in the related lipid-protein interaction network. Mutational analysis and (1)H NMR experiments were therefore performed on a synthetic PMP1 fragment using DPC-d(38) micelles as a membrane-like environment, in the presence of small amounts of POPS. A mutation designed for altering the helix groove was shown to disfavor the POPS binding specificity as much as that affecting the electrostatic interaction network. From POPS titration experiments monitored by a full set of one- and two-dimensional NOESY spectra, the association between the phospholipids and the PMP1 peptide has been followed. Our data reveal that the clustering of POPS molecules is promoted from a stabilized framework obtained by coupling the PMP1 helix groove to a POPS sn-2 chain. To our knowledge, the NOE-based titration plots displayed in this report constitute the first NMR data that directly distinguish the role of the sn-1 and sn-2 acyl chains in a lipid-protein interaction. The results are discussed while taking into account our accurate knowledge of the yeast plasma membrane composition and its ability to form functional lipid rafts.